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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!

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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
( p) O! |1 O! ?) d! {2 yAn Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
& f- o4 i& g8 z" J& Q  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus ( e' A' B. o) n* ~& H  M
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
& ^4 @- M5 s% ]* L' g9 z2 Q1 材料与方法
+ Y9 X2 @3 V6 a" H6 }2 W9 i1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
3 M5 [8 b! b1 a2 i表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 # Y# S2 d4 v3 [/ i7 m8 E! K

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表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果
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测定结果ρ(油)/(mg.L-1)$ f6 W  h. w5 w
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+ N6 j6 G7 Y2 q* d1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。
; p( o* A. f9 l- u0 R% W$ p5 C! ~7 d2 结果分析 / F6 j) _/ G% U5 C$ a% E
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
( c" |  b1 [4 T; V# o% |" C表3  4株机油降解菌形态特征 * ]. L, B2 R" `6 ~1 k
# c' D/ E0 D9 K# L- }) C& m- J% ]

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形态特征5 G+ `' o' X& L( O, ]9 p6 Q
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淡黄$ c, o+ b1 c$ ^% u4 T
淡黄" P; h: M6 r' {3 V# u9 @5 \$ S) v
粉红+ r9 ?/ ?! V; P6 R

$ h) g) a% e8 F8 }菌落形态
5 q' ?! I: V0 s! W6 i不透明,微隆起,全缘,
& p' O* l6 P! U0 G$ i, E半透明,圆形+ s  q2 `8 v! {# a$ G: n' M8 ^
半透明,圆形,隆起,
) l; U) N/ G8 `  t! m& `  a不透明,米粒状突起,
0 r3 X1 n* |; c' ?' I9 p9 a& o* c- q7 x
   x& _! \, r+ k4 p/ ]- Z) Q1 g9 g
光滑,有光泽
2 n% @! r4 ?1 X9 |1 b  }  b光滑,较干燥
  X" M  ]2 h6 I2 \- E$ y2 C* R. z6 r& @光滑,有光泽
* H/ s0 b" G& w# F3 P3 w较湿润
9 j* a9 b. Z! _2 M; k: H
# X9 c6 Y' g9 K  e( |1 x菌体形态
1 W8 q% o6 T: G' f* `1 V短杆3 k1 B1 y9 `' j. K# _! u
球形4 J& ^/ ^  y. _! L- |1 `( Q
杆状
( T2 s( }# N  e丝状" b; z7 D( ]* Q& l/ Y5 l

, |) \$ z/ W& `9 x" z1 j菌体大小/μm
$ ~5 ]  k* ?: W- v. r- P  }7 S) n/ O9 u(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
( T- h) R# {( L  Q& c- M; R/ ^' SΦ0.3
7 w2 \- d8 p  u1 ^1 _(0.5-0.8)×(1.3-5.0); N( S' e" M, k5 k5 `+ l8 ^
0.2×(6-60)
; W2 J; `- b) \& V# E) B
$ r: ^8 d, G. o& a8 o& X革兰氏染色
. n' B; o8 p) UG+ Z1 n+ r: y' C2 z' R9 I
G, P0 ~+ z* |5 N0 y) \
G
/ ~+ o$ b# T7 @8 a5 LG
% I  g$ N# ?. L4 U% \* i" R) P' P
  Y/ l  z5 r% E( L2 U- F初步鉴定- G2 X+ W1 w% T) W8 }- y% i
黄杆菌属
% L  S/ m; L% t$ X: v微球菌属
8 ?/ w0 v& f  N$ X0 y0 L& J# ~6 D假单胞菌属
( ^- b* x! }* I  y3 G( l酵母菌属
- d8 N3 J/ y) B+ H2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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3 结论
1 g, X( h% L$ w. F3 I7 V  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 6 y0 b* g8 \& I8 ~/ a$ l2 [, j' b
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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